MikroskooppiFotogrammetria
Milka Nuikka
Fotogrammetrian ja kaukokartoituksen laboratorio
Teknillinen korkeakoulu
Mikroskooppivalokuvia
käytetään kaikilla tieteenaloilla, joilla käytetään myös mikroskooppeja.
Esimerkiksi mikrobiologian, elektroniikan, metallurgian, lääketieteen ja
kriminologian aloilla mikroskooppikuvat ovat lähes korvaamattomia.
Valokuvaamalla
mikroskooppinäkymää, saadaan mikroskooppikuva tallennettua filmille tai
pikselimatriisiin. Näin kuvaa voidaan jälkeenpäin parannella ja suodattaa sekä
käyttää mittauksiin ja tutkimuksiin. Jos halutaan tallentaa liikkuvaa kuvaa
reaaliajasssa, kannattaa käyttää videokameraa.
Mikroskooppivalokuvauksessa
on erityisesti huomioitava mm. kuvaussysteemin kokoonpanoon ja kohteen
valaistukseen liittyviä tekijöitä. Erityisiä ongelmia voivat aiheuttaa myös
optiikan tietojen puute sekä tukitiedon tarkkuus.
Myös
kolmiulotteisen tiedon tarve mikroskooppitasolla kasvaa jatkuvasti ja
mikroskooppifotogrammetriassa voidaankin soveltaa makroskooppisesta
fotogrammetriasta tuttuja kuvaus- ja mittausmenetelmiä. Toisaalta esimerkiksi
stereomikroskooppikuvien ottamisessa on omat ongelmansa. Kapean kuva-alan takia
stereokuvaparille on vaikeaa saada tarpeeksi leveää kuvakantaa hyvän
stereovaikutelman luomiseksi.
Kohteiden mittaaminen mikroskooppikuvilta
on työlästä, koska mittausprosessin vaiheet on usein totuttu tekemään
manuaalisesti. Seuraavaksi pitäisikin selvittää, miten mittausprosessia voisi
automatisoida käsittelemällä digitaalisia mikroskooppikuvia jossain
fotogrammetrisessa ohjelmistossa. Tässäkin voidaan ottaa mallia
makroskooppitason menetelmistä
2 laitteisto
Mikroskooppikuvien
ottamiseen tarvitaan vähintään kamera ja mikroskooppi. Tämän lisäksi voidaan
käyttää erilaisia apuvälineitä kuten filttereitä, automaattisia
valaistusmittareita, katselumonitoreja jne. Laitteiston voi koota melko
helposti itse tai koko paketti voidaan ostaa valmiina.
Mikroskooppifotogrammetriassa
kuvia voidaan ottaa filmikameralla, digitaalikameralla, Polaroid-kameralla tai
videokameralla. Kameran laatu voi vaihdella suhteellisen yksinkertaisista
amatöörikameroista monimutkaisiin kamerasysteemeihin, jotka osaavat
automaattisesti optimoida valotusaikoja ja eliminoida mahdollisia
virhetekijöitä.
Kamera voi olla
erillinen mikroskooppiin kiinnitettävä kamera (kuva 1) tai kiinteä
mikroskooppikamerayhdistelmä (kuva 2). Erillinen kamera voidaan liittää
mikroskooppiin irrallisen adapteriosan välityksellä, joka kiinnitetään yleensä
kameran linssisysteemin paikalle (kuva 3). Kameroihin, joissa on kiinteä
linssisysteemi, voi olla vaikeampi löytää
sopivia
adaptereita. Kamera voi olla myös
mikroskooppikuvaukseen suunniteltu erikoiskamera, jolloin erillistä
välikappaletta ei tarvita, vaan kamera voidaan kiinnittää suoraan
mikroskooppiin. Kiinteä mikroskooppikamerayhdistelmä on vakaampi kokonaisuus,
jossa kamera ei pääse heilumaan. Se helpottaa myös huomattavasti valonsäteen
kulun kontrolloimista mikroskoopista kameraan.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Kuva 1: Tyypillinen amatöörilaite: Kamera on kiinnitetty mikroskooppiin adapterin
avulla. (http://www.durr.demon.co.uk/)
Kuva 2: Kiinteä mikroskooppikamerayhdistelmä
ammattilaiskäyttöön. (http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Kuva 3: Erilaisia kameran
linssisysteemin paikalle kiinnitettäviä adaptereita. (http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Mikroskooppikuvia
otettaessa kamerassa ei tarvita tavallista linssisysteemiä, koska mikroskoopin
linssisysteemi vaikuttaa osaltaan kuvan ja valaistuksen muodostukseen.
Mikroskooppikuva voidaan ohjata peilien avulla suoraan filmille, niin ettei
kamerassa tarvita ylimääräisiä linssejä (kuva 2: kiinteä
mikroskooppikamerayhdistelmä). Mitä vähemmän systeemissä on linssejä sitä
nopeampaa suljinaikaa voidaan käyttää ja minimoida näin tärinästä, alustan
liikkumisesta sekä valotuksesta aiheutuvia virheitä.
Eli
mitä yksinkertaisempaa linssisysteemiä käytetään, sitä parempilaatuisia kuvia
saadaan.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Mikroskooppivalokuvan
reuna-alueet saattavat joskus olla epätarkkoja johtuen linssin taittovirheistä.
Virhettä voidaan pienentää käyttämällä mahdollisimman laajaa kuvakulmaa ja
mahdollisimman isoa suurennuskerrointa okulaarissa. Yksinkertaisimmissa
kameroissa kuvakulmaa ei voi säätää, joten kuvan reuna-alueet jäävät helposti
epätarkoiksi.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Kuvaajan
työtä helpottaa, jos kamerassa on automaattinen valotusmittari, joka mittaa
valonmäärää ja ohjaa siten kameran suljinta. Valotusaika on silti hyvä osata
mitata myös manuaalisesti, sillä automaattimittarit toimivat luotettavasti vain
silloin, kun valotusaika on 1/3 sekunnista muutamaan sekuntiin.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Kun
mikroskoopissa käytetään isoja suurennuskertoimia, kuvan tarkennus kameran
etsimen kuvatasoon voi olla hyvin vaikeaa. Tehtävää voi helpottaa korvaamalla
kuvatason lasi mattalasilla, jossa on keskellä kirkkaampi alue ja hiusristikko.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Kameran
sulkimen olisi hyvä olla verho- tai keskussuljin. Keskussuljin on näistä
parempi, koska se liikkuu symmetrisesti ja aiheuttaa näin vähemmän värähtelyä
kameraan. Sitä kannattaa siis käyttää, jos käytetään muutenkin laadukasta
kameraa ja halutaan päästä tarkkoihin tuloksiin.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/filmcameras.html)
Mikroskooppi
valitaan sen mukaan kuinka laadukkaita ja tarkkoja kuvia halutaan, millaista
suurennuskerrointa halutaan käyttää ja minkälaista kohdetta kuvataan. Kuvan
laatu riippuu suoraan mikroskoopin laadusta.
Mikroskoopissa
tarkasteltava kohde on valaistava hyvin. Valistuksen olisi oltava
mahdollisimman tasainen, jotta mikroskooppikuvasta saadaan tarkka ja
tasalaatuinen. Käyttämällä ns. Köhlerin valaistusta koko kuvalle saadaan
tasainen valaistus ja hyvä kontrasti.
Köhlerin
valaistus (kuva 4) saadaan aikaan, kun valon lähde (lampun hehkulanka)
tarkennetaan linssin läpi aukon himmentimeen (aperture diaphragm), objektiivin
takapolttotasoon (rear focal plane) ja lähtöpupilliin (exit pupil) eli silmään
tai kameraan. Samanaikaisesti näkökentänhimmennin on tarkennettu kuvattavaan
kohteeseen, okulaarin aukkoon (hiusristikkotasoon) ja silmän verkkokalvoon.
(http://www.mcbaininstruments.com/reflib02.htm)
Kuva 4:
köhlerin valaistus
(http://flowcyt.cyto.purdue.edu/flowcyt/educate/confocal/524Lec1/sld014.htm)
3 tavallisimmat virheet mikroskooppivalokuvissa
Suurin osa
mikroskooppivalokuvauksessa tapahtuvista virheistä aiheutuu laitteiston
virheellisestä kokoonpanosta, huonosta valaistuksesta, vääränlaisista
suodattimista, vääränlaisesta valotuksesta tai käyttäjän tekemistä virheistä.
Nämä virheet aiheuttavat esim. kuvan tarkkuuden, kontrastin ja resoluution
heikkenemistä, kuvan valaistuksen epätasaisuutta ja siirtymää väritasapainossa.
Seuraavassa on
kerrottu muutamia esimerkkejä tavallisimmista virheistä ja niiden syistä.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors.html)
Vaikka
mikroskooppikuva näyttää okulaarin läpi tarkalta, valokuvasta saattaa silti
tulla epätarkka. Tämä voi olla merkki siitä, että filmi ei ole katseluoptiikan
suhteen vaakatasossa.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors.html)
Heikko kontrasti
kuvalla on yleensä merkki siitä, että mikroskoopin kondensorin himmennintä on
avattu liikaa, joten valoa pääsee liikaa läpi ja kuvan kontrasti heikkenee.
Myös vääränlaiset
suodattimet voivat vähentää kontrastia.
Kontrastiongelmat
voivat johtua myös kuvattavasta kohteesta. Läpikuultavia kohteita on vaikea
kuvata varsinkin, kun käytetään helotaustavalaistusta. Jos käytetään
vinovalovalaistusta, kontrasti paranee jonkin verran.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors.html)
Oikeanlaisen
tasaisen valaistuksen (Köhlerin valaistuksen) järjestäminen on yksi
tärkeimmistä asioista mikroskooppikuvauksessa. Valaistusongelmat johtuvat
yleensä siitä, että valon lähdettä ei ole kohdistettu oikein, tai että
objektiivin ja kondensorin himmentimet eivät ole kohdistettu oikein toistensa
tai mikroskoopin optisen akselin suhteen.
Nämä virheet
eivät välttämättä näy, kun katsotaan kohdetta mikroskoopinläpi, mutta
mikroskooppivalokuville ne aiheuttavat epätasaisen valaistuksen.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors.html)
Kun kuvauksessa
käytetään filmiä, jota ei ole tasapainotettu oikein valonlähteen
värilämpötilaan nähden, mikroskooppivalokuvassa saattaa ilmetä värisiirtymiä.
Tämä tarkoittaa sitä, että kuvaan tulee poikkeuksellisia värisävyjä, jotka
eivät vastaa kohteen oikeita värejä. Jos kuvasta tulee sinertävä, värilämpötila
on ollut liian korkea. Kellertävä väri tarkoittaa liian alhaista värilämpötilaa.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors2.html)
(Värilämpötila on
lämpötila, johon ideaalinen "musta kappale" täytyy kuumentaa, jotta
sen säteilytaajuus vastaisi tarkasteltavaa väriä. Värilämpötilamittauksen alue
alkaa absoluuttisesta 0-pisteestä ja yksikkönä on 1 Kelvin = 1 K )
(NetMOT
Sanakirjasto, http://www.kielikone.fi/restricted/finelib/netmot.shtml)
Valotusongelmasta
on kyse silloin, kun filmi saa liian vähän tai liikaa valoa valotuksen aikana
ja kuvasta tulee sen takia liian vaalea tai tumma ja kuvalta katoaa
yksityiskohtia.
Keskimääräinen
valaistus kuvattavan kohteen eri osissa voi vaihdella paljon ja kohteen
mielenkiintoisen osan valaistus ei välttämättä ole keskitasoa. Tämä vaikeuttaa
valotusajan arvioimista. Saattaa käydä esimerkiksi niin, että kuva on tahallaan
ylivalotettava, jotta hyvin tummat yksityiskohdat saadaan esiin muuten
vaaleasta kohteesta.
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/errors2.html)
4 erityiset Vaikeudet
Kun
mikroskooppikuvia otetaan tarkkaa mittausta ja tutkimusta varten,
seuraavanlaiset ongelmat ovat tavallisia:
Stereomikroskooppikuvien
ottaminen on vaikeaa mikroskoopin kapean kuva-alan takia. Kuvaparin ottamiseen
on kuitenkin olemassa seuraavanlaisia vaihtoehtoja:
a)
Stereopari
voidaan kuvata siirtämällä mikroskooppia ja kameraa ja pitämällä kappale
paikallaan kuvien oton välillä. Kapea näkökenttä sallii kuitenkin vain hyvin
pienen siirron ja stereoparille tulee lyhyt kanta.
b)
Yksi
mahdollisuus on käyttää konvergenttikuvausta, jolloin kohdetta kallistetaan
kuvauksien välillä. Tämä on kuitenkin melko hankalaa, kun kyseessä on hyvin
pieni kohde ja varsinkin, jos kallistuskulma pitää mitata. Kallistuskulman
säätelyyn tunnetaan erilaisia tekniikoita, mutta ne vaativat usein työläitä
alkuvalmisteluja. Kallistuskulma jää usein myös niin pieneksi, ettei kohteesta
pystytä tekemään tarpeeksi tarkkoja syvyysmittauksia tasomittauksiin
verrattuna. Myöskin relatiivisen orientoinnin tulos jää tällöin heikolle
pohjalle.
c)
Stereoskooppinen
peitto voidaan saada aikaan myös kiertämällä mikroskooppia kuvien oton välillä.
Tämä on kuitenkin melko kömpelö tapa ja kiertokulman määrittäminen on vaikeaa.
(Digital
Photogrammetry and Microscope photographs)
Mikroskooppien
teknisissä tiedoissa kerrotaan yleensä mikroskoopin suurennuskerroin, aukon
koko, terävyysalue, kuva-ala, mutta vastaavat pääpisteet ja linssivirheet
puuttuvat usein ja ne on selvitettävä itse. Lisäksi zoomilinssisysteemin käyttö
voi tehdä sisäisen orientoinnin kontrolloimisen entistä vaikeammaksi.
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Kohteeseen
sidottua tukitietoa tarvitaan mittaustulosten tarkkuuden ja kalibroinnin
tarkistamiseen. Pienten kuvauskohteiden kanssa voi olla vaikeaa taata
tukitiedolle riittävä tarkkuus ja tukipisteille hyvä sijainti. Ongelma pahenee,
kun kuvauskohteen koko pienenee.
(Digital
Photogrammetry and Microscope photographs)
5 koetyö
Pienten kohteiden
mittaamista mikroskooppikuvilta ja mittausprosessin automatisointia on tutkittu
mm. Australiassa Newcastlen yliopistossa. Siellä tehtiin koetyö, jossa 35mm
värifilmille kuvattiin kolmea kohdetta optisen mikroskoopin läpi.
Mikroskoopissa käytettiin pienintä suurennuskerrointa. Filmille tallennetut kuvat
skannattiin resoluutiolla 0.016mm/pikseli. Lopuksi kuvat tuotiin
VirtuoZo-ohjelmistoon orientointia ja mittausta varten.
(Digital Photogrammetry and
Microscope photographs)
Kolme
valokuvattua kohdetta:
1) Betonipala, josta haluttiin selvittää
betonin lujuus. Betonissa arveltiin olevan mittausta varten hyvä radiometrinen
tekstuuri ja sopivan rakeinen pinta. Kohteen arveltiin kuitenkin olevan liian
vaikea kuvien automaattista prosessointia ajatellen.
2) Pätkä 5 mm paksua betoniterästankoa, josta
haluttiin tietää sidoslujuus. Tangon pinta oli melko tasainen ja sen arveltiin
siksi tuottavan ongelmia mittauksessa.
3) Pala ihmisen hammasta, josta haluttiin
tutkia hampaan pintaa ja hammasmätää. Tässä näytteessä oli kaikista tasaisin
pinta.
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Käytetty
mikroskooppi oli Olympus SZ6045TR ja suurennuskerroin pienin mahdollinen eli
1.0. Lisäksi käytettiin 0.5 kertoimista
(reducing) linssiä. Valokuvan mittakaavaksi saatiin noin 1.8:1, joten n.20mm
pitkät kohteet skaalautuivat sopivasti 35mm leveällä filmille. Tässä työssä ei
otettu huomioon linssivirheen aiheuttamia vääristymiä kuvalla.
Kuvauksessa
käytetty kamera oli Olympus TTL auto-exposure 35mm SLR. Filminä oli Kodak 100
ASA Ektachrome värinegatiivifilmi. Valotusajat olivat hyvin pitkiä n. 40
sekuntia, koska valaistus ei ollut kovin tehokas, kohteet olivat tummia ja
mikroskoopin suurennuskerroin pieni.
Digitaalikameraa
ei käytetty, koska saatavilla ei ollut resoluutioltaan tarpeeksi tarkkaa
kameraa. Lisäksi digitaalikameran linssille olisi tarvittu erikoisadapteri.
Skannaus tehtiin
Nikon LS-4500AF 200 mm skannerilla tarkkuudella 0.016mm/pikseli. Tuloksena
saatiin kuvia BMP muodossa.
Kuvat siirrettiin
käsittelyä varten VirtuoZo (v 3.0) ohjelmaan Silicon Graphics Indy työasemalle.
Kuvien formaatti muutettiin tässä vaiheessa BMP muodosta VirtuoZo:n omaan
formaattiin.
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Kuvaparin
ottamista kokeiltiin aikaisemmin esitetyillä menetelmillä.
Mikroskoopin
rungon kääntely sai tässä tapauksessa aikaan hyvin pienen konvergenssikulman.
Lisäksi operaatio oli hankala suorittaa ja vaati erityistä huolellisuutta.
Kohteen
siirtäminen valotusten välillä ei myöskään osoittautunut käyttökelpoiseksi
keinoksi, sillä se antoi liian pienen kuvakannan stereokuvaparille.
Kohteen
kallistelukin oli vaikeaa, mutta näistä paras vaihtoehto. Valonlähdettä
kallistettiin kohteen kanssa samassa kulmassa, niin että valaistus pysyi
kohteessa mahdollisemman tasaisena.
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Ennen kuvien
orientointia ja mittaamista piti selvittää kuvaussysteemin polttoväli.
Mikroskoopin objektiivi muodostaa (oikean) kuvan, josta toinen linssisysteemi muodostaa
lopullisen kuvan kameran kuvatasoon. Voidaan kuitenkin ajatella, että tämä
linssisysteemi on yksi ainoa linssi, jonka polttoväli on c ja kohteen etäisyys
tästä linssistä Z. Näitä arvoja ei tunneta etukäteen ja niiden selvittäminen on
melko vaikeaa.
Arvojen suhde
voidaan ratkaista kuvan mittakaavan avulla. Välimatka c+Z voidaan joskus
arvioida olevan kohteen ja filmin välinen etäisyys, mutta tämä ei toimi
mikroskooppikuvilla, koska linssit eivät yleensä ole samassa päätasossa.
Kapeassa
näkökentässä väärä polttovälin arvo aiheuttaa suurimman virheen Z-akselin
suunnassa. Tätä tietoa hyödynnettiin asettamalla kuvattavan kohteen vierelle
kontrollikappale, jossa oli tunnettuja korkeuksia. Näitä korkeuseroja mitattiin
alkuperäisiltä filmikuvilta analogisella stereokojeella eri polttovälin
arvoilla, kunnes korkeuseroille saatiin oikeat lukemat. Näin saatiin arviot
polttovälille c (500 mm) ja kohteen etäisyydelle Z (320 mm).
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Kun kuvat oli
tuotu VirtuoZo-ohjelmaan, niille tehtiin ensin orientoinnit.
Sisäistä
orientointia, joka perustuu kuvan reunamerkkien mittaamisen ei tarvittu.
keskinäisen
orientoinnin ohjelma suoritti automaattisesti. Ohjelma etsi kuvilta noin 150
pistettä ja sovitti niitä yhteen. Orientointi sujui ongelmitta myös
tasapintaisten kappaleiden kohdalla, koska apua saatiin kappaleen ympärille
asetetuista karheapintaisemmista apukappaleista. Betonin palan kohdalla
jäännösneliövirheeksi tuli 0.12 mm.
Absoluuttista
orientointia ei olisi tarvittu, koska
kappaleiden sijainnilla ulkoisessa koordinaatistossa ei ollut
merkitystä. VirtuoZo-ohjelma vaatii kuitenkin myös absoluuttisen orientoinnin
suorittamisen, joten se oli pakko tehdä. Tästä aiheutui ylimääräistä työtä
etenkin, koska tukipisteiden mittaaminen pienestä kohteesta oli vaikeaa.
Seuraavaksi
ohjelmalla muodostettiin epipolaarikuvat ja suoritettiin kuvien automaattinen
yhteensovitus. Sovitus sujui betonipalankohdalla ongelmitta, mutta
betoniterästanko- ja hammaskuvien sovitus ei onnistunut puutteellisen
tekstuurin vuoksi. Nämä kappaleet jätettiin tässä vaiheessa pois tutkimuksesta.
Lopuksi
muodostettiin kohteen numeerinen maastomalli. Malli tehtiin yhteensovituksessa
käytettyjen pisteiden avulla. Numeerisen maastomallin ominaisuudet riippuvat
paljon käyttäjän asettamista parametreista, joten joitakin ongelmia tuli ensin
esiin, mutta kokeilemalla erilaisia parametriyhdistelmiä päästiin lopulta haluttuun
tulokseen.
Tässä vaiheessa
selvisi myös, että VirtuoZo-ohjelma tarvitsee suuren määrän pisteitä
pystyäkseen luomaan maastomallin. Niinpä pienessä kohteessa pisteväli oli alle
millimetrin. Toisaalta ohjelma kuitenkin vaatii, että pistevälin on oltava
kokonaisluku. Ohjelmassa oli siis muutettava asetuksia niin, että kohteen koko,
kameran polttoväli ja pikselikoko ilmoitettiin kymmenesosamillimetreinä.
(Digital Photogrammetry and Microscope photographs)
Kun betonipalan
malli oli muodostettu, valittiin kuvilta 10 malliin kuuluvaa hyvin erottuvaa
pistettä ja mitattiin ne analyyttisellä stereokojeella. Saatuja koordinaatteja
verrattiin ohjelman automaattisesti mitattaamiin koordinaatteihin. Korkeuksien
keskivirheeksi saatiin 0.01mm ja jäännöskeskineliövirheeksi 0.15 mm eli
betonipalan kohdalla menetelmällä saavutettiin hyvä tarkkuus.
(Digital
Photogrammetry and Microscope photographs)
Mittausprosessin
automaattiset vaiheet tuntuivat toimivan hyvin. Etenkin konvergenttikuvien
keskinäinen orientointi ja yhteensovitus onnistui erinomaisesti. Lopullinen
maastomallikin saatiin muodostettua hyvällä tarkkuudella.
Suurimmat
ongelmat aiheutuivat tukipisteiden tarpeesta, vaikka absoluuttiselle
orientoinnille ei ollut edes käyttöä sekä epätavallisen pienestä mittakaavasta,
pikselikoosta ja epävarmasta kuvausgeometriasta. Nämä ongelmat ovat kuitenkin
sellaisia, että ne tarvitsee ratkaista vain kerran ja seuraavat
mittausprojektit sujuvatkin jo helpommin. Suurin osa ongelmista hoituu
asettamalla ohjelmaan sopivat parametrit. Tukipisteiden hankintaa varten
kannattaisi käyttää geometrialtaan tunnettua kappaletta, jonka voisi asettaa
kuvaan ja josta tunnetut pisteet olisi helposti mitattavissa.
Johtopäätöksenä
voidaan siis sanoa, että mittaaminen digitaalisilta mikroskooppikuvilta
onnistuu olemassa olevilla ohjelmistoilla. Näin ollen mittauksen
automatisoinnistakaan ei aiheudu uudenlaisia haasteita.
Seuraavassa on
esimerkkinä muutamia mikroskooppikuvia eri tieteen aloilta. Kuvat on otettu
optisella mikroskoopilla ja ne löytyvät internetsivuilta osoitteen http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery
alta. Tästä osoitteesta löytyy paljon muitakin kuvia mm. antibiooteista,
oluista, kolesterolista, dna:sta, hajuvesistä, jäätelöistä, urheiluvälineistä,
mineraaleista, höyhenistä jne.
Kuva 5: Coca-Cola
(http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/softdrink/softdrink.html)
Kuva 6: 7Up
(http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/softdrink/softdrink.html)
Kuva 7:
Keltarauhashormoni
(http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/hormones/hormone.html)
Kuva 8:
Magneettifilmi
(http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/magnetfilm/magnetfilm.html)
Kuva 9:
c-vitamiini (http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/vitamin/vitamin.html)
Kuva 10:
e-vitamiini
(http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/vitamin/vitamin.html)
Kuva 11: Bon Jovi
cd (http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/computers/computer.html)
Kuva 12:
DNA-”sormenjälki” (http://micro.magnet.fsu.edu/micro/gallery/crime/crime.html)
Mikroskoopin ja
kameran avulla on tehty myös taiteellisia ”maisemakuvia”. Kuvat on tehty
valottamalla filmiä useaan kertaan (yleensä 2-9 kertaa) ja käyttämällä
valotusten aikana erilaisia maskeja, fokusointia ja vaihtamalla
mikroskooppinäkymään erilaisia kappaleita. Kuvat 13-15 ovat esimerkkejä tällä
menetelmällä valmistetuista kuvista.
Kuva 13
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/creative.html)
Kuva 14
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/creative.html)
Kuva 15
(http://micro.magnet.fsu.edu/primer/photomicrography/creative.html)
Mitchell H. L., Kniest H. T., Oh Won-Jin, 1999. Digital Photogrammetry and Microscope Photographs. Photogrammetric record, 16(94): 695-704.
Molecular Expressions Website
, http://micro.magnet.fsu.edu/
Steve Durr’s Homepage,
http://www.durr.demon.co.uk/
http://www.mcbaininstruments.com/reflib02.htm
Purdue University
Cytometry Laboratories http://flowcyt.cyto.purdue.edu/flowcyt/educate/confocal/524Lec1/sld014.htm
NetMOT
Sanakirjasto, http://www.kielikone.fi/restricted/finelib/netmot.shtml)